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Solarbio 葡聚糖凝膠G-50

說(shuō)明：分離試劑，層析介質(zhì)。

應(yīng)    用：利用分子篩作用，進(jìn)行多肽分離、脫鹽、清洗生物提取液、分子量測(cè)定

性    狀：白色微球，多孔

凝膠類型：凝膠過(guò)濾填料，親水型凝膠

結(jié)構(gòu)成分：交聯(lián)右旋糖酐

粒    徑：細(xì)顆粒20-80µm，中顆粒50-150µm，粗顆粒100-300µm

工作PH值：2-10

操作溫度：4-40℃

球蛋白分離范圍：1500-30000

保存條件：4-25℃

化學(xué)和物理性質(zhì):

葡聚糖凝膠是一種珠狀的凝膠，含有大量的羥基，很容易在水中和電解質(zhì)溶液中溶脹。 G型的葡聚糖凝膠有各種不同的交聯(lián)度，因此它們的溶脹度和分級(jí)分離范圍也有所不同。 葡聚糖凝膠的溶脹度基本上不因鹽和洗滌劑的存在而受影響。

葡聚糖凝膠有不同的粒度。超細(xì)級(jí)的葡聚糖凝膠是用于需要*分辨率的柱色譜和薄層色譜。粗級(jí)和中級(jí)的凝膠用于制備性色譜過(guò)程，可在較低的壓力下獲得較高的流速。 另外，粗級(jí)也可用于批量工藝。

化學(xué)穩(wěn)定性:

葡聚糖凝膠不溶于一切溶劑(除非它被化學(xué)降解)。 它在水、鹽溶液、有機(jī)溶劑、堿和弱酸性溶液中都是穩(wěn)定的，在強(qiáng)酸中凝膠骨架的糖昔鍵被水解。 長(zhǎng)期接觸氧化劑將破壞凝膠，因而應(yīng)避免使用。

物理穩(wěn)定性:

葡聚糖疑膠并不熔融，可以在濕態(tài)、中性PH進(jìn)行滅菌或在高壓滅菌器120℃、30分鐘而不影響它的色譜性質(zhì)。 干態(tài)的凝膠加熱120℃以上將開始焦糖化。 葡聚糖凝膠的機(jī)械強(qiáng)度取決于交聯(lián)度。

使用方法:

1. 葡聚糖凝膠預(yù)處理：

在室溫下，將葡聚糖凝膠干粉浸泡于蒸餾水中少24小時(shí)，并不斷攪拌以保證凝膠溶脹，或者用熱水浸泡（不建議煮沸）少1小時(shí)直充分溶脹，凝膠體積不再變化。

注：在溶脹前，加入蒸餾水?dāng)嚢韬笫蛊渥匀怀两?，沉降后若上層溶液中漂浮的凝膠碎片顆粒較多，需要重復(fù)多次漂洗將其除去，防止層析時(shí)阻塞凝膠柱，影響流速。

2. 裝柱：

將溶脹好的凝膠根據(jù)裝柱要求一次性置入柱內(nèi)，注意保持濕態(tài)裝柱，并避免柱內(nèi)產(chǎn)生氣泡或斷層; 裝柱要均勻，可在凝膠耐受的操作壓下裝柱，裝好的凝膠柱可以檢測(cè)柱效，檢測(cè)過(guò)濾柱裝填是否合格。

凝膠層析分離度取決于柱高，為分離不同組分，凝膠柱床必須有適宜的高度：分級(jí)分離時(shí)，一般需要 100cm 左右長(zhǎng)的層析柱，柱高與直徑之比為 20:1-100:1，柱高過(guò)高時(shí)，凝膠擠壓變形阻塞會(huì)引起較大的反壓，應(yīng)當(dāng)盡可能避免；分組分離（例如脫鹽）時(shí)用短柱，柱高控制在40-50cm 以下，柱高與直徑的比約為 5:1-10:1。

3. 平衡：

上樣前用平衡液平衡層析柱少3-5個(gè)柱體積直到記錄儀基線變得平穩(wěn)為止（例如流出液的PH值等于上柱的Buffer的PH值）；

4. 上樣：

分級(jí)分離時(shí)上樣量一般為5%的柱床體積，我們建議初次上樣控制在1-2%的床體積，視分離情況可以調(diào)整;脫鹽時(shí)上樣量可以達(dá)到20%的柱床體積。

樣品溶液如有雜質(zhì)或沉淀應(yīng)過(guò)濾或離心除去，樣品的粘度不能過(guò)高，否則影響分離效果。

5. 洗脫方法:

可以用無(wú)鹽水，也可以采用上柱時(shí)的緩沖液洗脫；在上柱緩沖液中加入NaCl等梯度洗脫或鹽梯度洗脫也可以*分離純化；

6. 在位清洗(CIP)

凝膠使用十次后作一次CIP，目的是去除柱床內(nèi)沉淀的及頑固殘留的蛋白。 方法是以40cm/h用1M氫氧化鈉反向清洗四個(gè)柱體積，再以少三個(gè)柱體積平衡緩沖液再生。

7. 保存

凝膠柱暫時(shí)不用，可將其回收，一般方法是將凝膠用水沖洗干凈濾干，可加入0.02%疊dan化鈉防腐或用20%乙醇浸泡，以控制微生物生長(zhǎng)。

Solarbio 葡聚糖凝膠G-50